表达序列标签 什么是表达序列标签

Myc，GST，His标签的氨基酸序列分别是什么？它们的分子量分别有多大

首先，这个问题存在逻辑颠倒的毛玻 酶切位点的选择一定是要避开目标片段内包含的位点，因为如果不避开到时候酶切就会把目的片段切开。在目的片段和载体之间的酶切位点都是扩增引物带入的。

（1）HA tag序列：TAC CCA TAC GAC GTC CCA GAC TAC GCT

表达序列标签 什么是表达序列标签

表达序列标签 什么是表达序列标签

亲和性标签

（2）6 X His tag 序列：CAT CAT CAC CAT CAC CAT

（3）GST标签序列亲和标签大都有特异性的配基，利用这些配基可以方便的用亲和层析的方法对融合蛋白进行分离和纯化。：

1 ATGTCCCCTATACTAGGTTATTGGAAAATTAAGGGCCTTGTGC

351 TTGTATGAGCGCGATGAAGGTGATAAATGGCGAAACAAAAAGTTTGAATT

401 GGGTTTGGAGTTTCCCAATCTTCCTTATTATATTGATGGTGATGTTAAAT

451 TAACACAGTCTATGGCCATCATACGTTATATAGCTGACAAGCACAACATG

551 GGTTTTGGATATTAGATACGGTGTTTCGAGAATTGCATATAGTAAAGACT

601 TTGAAACTCTCAAAGTTGATTTTCTTAGCAAGCTACCTGAAATGCTGAAA

651 ATGTTCGAAGATCGTTTATGTCATAAAACATATTTAAATGGTGATCATGT

701 AACCCATCCTGACTTCATGTTGTATGACGCTCTTGATGTTGTTTTATACA

751 TGGACCCAATGTGCCTGGATGCGTTCCCAAAATTAGTTTGTTTTAAAAAA

851 TATAGCATGGCCTTTGCAGGGCTGGCAAGCCACGTTTGGTGGTGGCGACC

901 ATCCTCCAAAATCGGATCTGGTTCCGCGTGGATCCCCGGAATTCCCGGGT

951 CGACTCGAGCGGCCGCATCGTGACTGA

感觉这样的提问没有意义

建议自己下去查查资料

跨叠群是什么

定义：一组含有邻近序列或重叠序列的DNA序列克隆群。这些克隆的序列间有相互重叠，每一个克隆是整个群体中的一个单元，都是该DNA连续序列中的一段。可以从多个重叠单元的序列得到完整绿色荧光蛋白( green fluorescent protein，GFP)的DNA连续序列。如从一群序列重叠的表达序列标● 虽然多聚组氨酸融合标签因为分子量小且带电荷而几乎不影响蛋白质的活性，但是通常不能完全排除亲和标签影响其蛋白质活性的可能，因此一般会选择在变形条件下进行蛋白纯化来避免这种现象的发共同特点：生。签可以得到一个完整的互补DNA序列。

可以his两个标签都表达嘛

2个HIS标签，每个有0.8KD，若你所表达序列有终止密码子的话，只表达一可以的。个his标签，s-tag有1.7KD，再加上你的目的序列所表达出来的作者的结果显示Xist的两个外显子起源于Lnx3。然而，Lnx3和Xist分别含有11个和6个其他的外显子，因此，不能检测到显著的相似性。此外，作者也没有检测到Xist中A-重复序列(A-repeat)的同源序列，而该序列是不连续的序列元件，暗含着沉默X染色体的功能[13]。这种缺乏可能是由于RNA基因和蛋白基因遭受着极其不同选择性限制和快速分歧开来。也有可能Xist的前几个外显子与Lnx3不同源，由于某个序列(如转座元件)的插入而获得的，而插入的序列被利用而形成proto-Xist。作者还分析了Rasl11c和Lnx3在负鼠基因组上间隔以便搜寻到潜在的proto-Xist基因的标志，然而还是不能检测与Xist存在显著相似性的序列。考虑到Xist外显子在真哺乳亚纲动物之间高度保守，负鼠中这种相似性的缺乏强烈地表明有袋动物在这个位点上不含有任何proto-Xist，因此Xist是特异性地存在于真哺乳亚纲动物中。蛋白就融合蛋白的总大小。muchong5577(站内联系TA)有文献：加了his标签的表达蛋白在sds的时候分子大小会产生偏。wordsworth3180(站内联系TA)我跑电泳看到的载体蛋白大概有16-17kdly888lsp(站内联系TA)6个组氨酸和19KD左右的硫301 AACCCACTCGACTTCTTTTGGAATATCTTGAAGAAAAATATGAAGAGCAT氧还蛋白再加上目的蛋白DDDD

如何查看载体序列图谱的酶切位点是否在表达框里

当哺乳动物从其他的羊膜动物(amniote)中分化出来后不久，哺乳动物的X和Y染色体便从一对常染色体中进化而来[1]。在哺乳亚纲动物和有袋动物中，雄性的XY染色体和雌性的XX染色体之间的基因剂量上的不平衡通过沉默雌性中的一条X染色体而得以弥补[2-4]。在哺乳亚纲动物里，这种沉默作用涉及Xist基因，该基因位于X染色体失活中心(X inactivation center,Xic)，编码一个长的非翻译性的RNA[5]。Xic位于人类X染色体的长● 标签对目的蛋白的三维结构或是生物学活性影响很小；臂上，这与哺乳动物一个共同祖先(cenancestor)(6,7)原始的X染色体上的情形吻合。这种观察也也这一假设相一致，即在哺乳动物进化早期，X染色体的失活可能与染色体的性别决定机制同时进行[8]。

一般都会在表达蛋白前面加入序列标签，一般都是组氨酸标签，便于后续的蛋白纯化。但是不要加的太长了，还有就是多出的碱基一定要是3个3个一组的，不能打破了你的蛋白的开放阅读框。多出几个残基对蛋白的影响不会太大，基本可以忽略。这个就要看你的启动子序列之后有没有ATG，如果没有的话就需要加入，有的话就不需要。

优点

插入的基因终止密码子没去还能表达后面的组氨酸标签吗

融合蛋白的表达是这样解决的：制造出的mRNA会有两个基因序列，当翻译个基因而碰到终止密码子是，核糖体会从mRNA上掉下来，而造成第二个基因无法翻● 研究表明GFP融合蛋白可以通过铜离子或锌离子固相化金属层析柱纯化；译。解决这一问题的方法，是在两个基因● 多种宿主细胞已被证实可用于His融合标化重组蛋白，包括:细菌、酵母、哺乳动物细胞、杆状感染的昆虫细胞；之间加入一个内部核糖体进入位点(internal ribosome entry site,IRES）序列，让第二个基因可由IRES处进行翻译，制造出两个不同的蛋白质有多少基因记不太清了，反正一共是30亿个碱基。

朱玉贤的主要研究领域

● 标签易于切除；

主要通过研究陆地棉花纤维发育早期的功能基因组、转录组学及雷蒙德氏棉、棉功能基因组，探索纤维突起、伸长的分子机制及调控规律。通过大规模转录组学分析法，获得大量纤维突起或伸长阶段特异性表达基因（重点是棉花转录因子基因家族成员以及激素受体基因）,探索棉花基因功能鉴定的新方法。用RT-PCR等基因表达分析方法研究已克隆的基因在棉花发育过程中的器官、组织及发育时期等时空表达特性，推测这些基因在棉纤维发育过程中的作用。分离鉴定植物激素信号途径对棉纤维发育起重要调控作用编码关键转录因子的基因，阐明植物激素对纤维发育的关键作用。以雷蒙德氏棉（Gossypium raimondii）的基因组为参考序列，我们将目前NCBI数据库中存在的299条陆地棉（Gossypium hirsutum）表达序列标签（EST）进行了重新组装和分析，得到了425条单基因簇（UniGenes）。这些单基因簇的平均长度达到了1019碱基对，显著超过之前组装的804和7碱基对。其中，长度超过3千碱基对的单基因簇的数目从30条左右增加到1223条。我们的结果说明，雷蒙德氏棉基因组的参考序列对四倍体棉花转录组的组装起到非常大的推动作用。转录组分析分析显示，四倍体棉花里来自A和D亚基因组的基因在转录模式上有显著异。在四倍体转录组中，29547个单基因簇可能来自于D亚基因组的贡献，而另外19578个单基因簇可能是A亚基因组转录出来的。，大规模数据分析得到的一些棉纤维发育关键基因在转录水平的异可被RT-PCR实验证实。通过高通量测序方法获得了8.5G碱基对高质量、无污染的转录组测序数据，将约85%的测序数据贴回参考基因组序列上，共鉴定了超过15万个剪切结点，在10197个基因中发现了16437个可变剪切。结果显示，平均每四个棉花基因，就有一个存在可变剪切现象，说明可变剪切在棉花基因组中是一种广泛存在的现象。在这些可变剪切当中，“内含子保留”类型占最多的比例（40%），而“跳过外显子”类型是最少的。我们● His标签能在变性条件下纯化蛋白，故己经聚集成包涵体的蛋白可溶解在适当的溶剂中(如:尿素、盐酸胍)；选取11个不同的真合生物进行横向比较，证实“内含子保留”类型在高等植物中所占的比例是的，但是在脊椎动物当中“跳过外显子”的比例，“内含子保留”反而最少。为了解释这巨大异的来源，我们进一步对棉花发生“内含子保留”的基因进行分析，结果发现尽管转座因子的插入在棉花所有内含子中所占比例只有2.9%，但是在保留的内含子中比例竟高达43%，这暗示了转座因子的插入可能与内含子的选择性保留有关。大量的数据分析显示，插入到保留内含子中的转座因子并不是随机分布的，而是富集在3’剪切位点上游0-40个碱基的区段上，从而影响了该段序列的RNA二级结构的柔重叠群 英文名称：contig性并导致分支位点偏离位置，在内含子剪切的过程中不能发挥正常的作用，最终导致内含子的保留。我们的结果暗示，转座因子插入所介导的分支位点的分布改变对于内含子保留类型的可变剪切有重要作用，该发现有助于解释植物和动物之间存在的内含子保留异。实验室前期从Salk种子库中得到一个与乳腺癌同源基因的突变体row1-3，该突变体根部表型剧烈。其根部极其短小不能正常发育，成熟区细胞不能正常分化与伸长，QC及向地性完全丢失，同时其根尖不含淀粉粒，结构模糊不具有典型的根端分生组织结构，表明其也不能进行正常的分化。通过对其表型分析结合PCR与GFP技术，我们找到了ROW1基因缺失后可能造成以上剧烈表型的原因，即WOX5过量表达造成的。通过遗传学实验方法，对该突变体中的WOX5完全敲除或者部分敲除可以回复或者部分回复该突变的表型，在row-3/wox5-1双突变体中，其跟的伸长和向地性恢复，同时其根端分生组织可以正常风化产生含淀粉粒的小柱细胞。进而证明了ROW1是WOX5的负调控因子，通过抑制WOX5的表达来限定该基因只在QC细胞中表达。

EST序列的应用

FlaHis标签g标签是由八个亲水氨基酸构成的一段寡肽，序列为Asp-Tyr-Lys-Asp-Asp-As②由于N2NTA可被还原，在厌氧条件下也不要使用该办法。p-Asp-Lys，可用于蛋白纯化及检测。

EST作为表达基因所在区域的分子标签因编码DNA序列高度保守而具有自身的特殊性质,与来自非表达序列的标记(如AFLP、RAPD、SSR等)相比更可能穿越家系与种的限制,因此EST标记在亲缘关系较远的物种间比较基因组连锁图和比较质量性状信息是特别有用。同样,对于一个DNA序列缺乏的目标物种,来源于其他物种的EST也能用于该物种有益基因的遗传作图,加速物种间相关信息的迅速转化。具体说,EST的作用表现在: (1)用于构建基因组的遗传图谱与物理图谱; (2)作为探针用于放射性杂交; (3)用于克隆; (4)借以寻找新的基因; (5)作为分子标记; (6)用于研究生物群体多态性; (7)用于研究基因的功能; (8)有助于物的开发、品种的改良; (9)促进基因芯片的发展等方面。正是因为EST表现出了这些巨大潜能,使其得到了充分的利用与发展。

什么是人类基因组？其结果显示人类有多少个基因？这些基因是否只能表达同数量蛋白质，为什么？

类型多种多样，要结合自己实验样品的特点进行选择。

建议看看 百度百科的 人类基因组 词条

人类基因组就是要破译人类46条染色● 可以和其它的亲和标签一起构建双亲和标签。体上所有DNA的碱基排列顺序

事实上只有24种染色体22+X+Y

要把这30亿个碱基的排列顺序都做出来，不得不说是一项巨大的工程

承担1%，3优点000万的碱基排序

其他问题看不懂

求助蛋白表达中的his标签的作用

HA融合蛋白也是一种小肽，由9个氨基酸组成( YPYDVPDYA)，其来源于流感的红细胞凝集素表面抗原决定簇。对外源目的蛋白的空间结构影响较小，容易构建成标签蛋白融合到N端或者C端。易于用抗HA抗体检测和ELSA检测。

his标签蛋白就是：六个组氨酸。一般存在于重组蛋白氮端或碳端，便于纯化该重组蛋白，组氨酸可以特异性的结合镍离子，带有组氨酸标签的重组蛋白可以被镍柱吸附，从而达到纯化的目的。重叠群又称跨叠群也就是在表达载体上面，特别加六个组氨酸的碱基序列，目的就是纯化。……………………

GFP是发光生物体内广泛存在的一类蛋白质，不需要激发即可发出一定波长的荧光，因此被广泛用于蛋白质在活细胞体内的空间、运动变化等的研究。

Xist基因是什么？

★ 可南京铭研生物的his抗体（MY1901）,申领的免费试用后结果挺不错的，价格也比较便宜，挺不错的品牌！

Xist基因的非编码性RNA是真哺乳亚纲哺乳动物(eutherian mammal)中X染色体失活过程的关键性起始物，然而它的功能和起源仍然不清楚。尽管Xist在真哺乳亚纲保守性较好，但在其他的哺乳动物动物中还未找到它的同源物。作者显示Xist至少部分上是从一个编码蛋白的基因进化而来的，而Xist原始类型(proto-Xist)的蛋白编码功能的丢失与Xist两端存在着四个蛋白编码的假基因相一致。这一在真哺乳亚纲动物和有袋动物(marsupial)进化上分开后发生，这就表明这两个世系(lineage)的剂量补偿进化机制是的。

801 CGTATTGAAGCTATCCCACAAATTGATAAGTACTTGAAATCCAGCAAGTA

为了研究X染色体失活的进化机制，作者在14脊椎动物基因组中搜索了14个Xist同源物，发现在真哺乳亚纲动物的一个共同祖先上已经存在，然而在非真哺乳亚纲的脊椎动物里不能检测Xist的明显序列相似性。

为了搜索XicHR基因在真哺乳亚纲中可能存在的痕迹，作者将鸡基因组序列与代表真哺乳亚纲动物不同目(人类、老鼠、狗和牛)的基因组序列进行比较。在鸡中XicHR序列覆盖162kb(而人类中为998kb)，由5％的外显子(人类中为2％)和3％的重复序列(人类中为59％)组成。人类和鸡基因组序列的比较还显示在非重复性序列里存在22个比对序列。尽管这些比对序列较短(在平均62bp序列有72％的同源性)，但是其中8个与鸡中已知的外显子重叠，而与人类中的已知外显子重叠的只有5个。这些比对是由于偶然性产生的概率非常低，表明它们属于保守性区域，在人类和鸡中保守。作者在鸡中总共检测63个明显不同的片段，覆盖3.4kb，能与真哺乳亚纲这四种种类的至少一种比对上，其中这些比对序列中的12与来自鸡,，Lnx3和Rasl11c的外显子重叠。

Fipll2的六个外显子与人类或老鼠的序列有同源性，其中的3个外显子人类Tsx外显子同源。蛋白质的比对结果表明老鼠的Tsx是一个被截断的基因，编码一个与Fip1l2的编码蛋白的氨基端垂直同源的蛋白。Tsx(不论是转录物还是翻译物)在大鼠和小鼠中都是功能性的，但是进化速度比较快[10]。Tsx在人类、狗和牛中都是假基因[9]。作者在牛和狗中鉴定出Rasl11c基因的四个外显子同源物，人中也有一个，而老鼠中没有。然而在这些物种中，Rasl11c已经成为假基因。Lnx3的两个外显子与Xist同源，其中个与Xist中在真哺乳亚纲动物比较保守的h4/m4外显子同源在人类位于Xist基因附近的基因组区域含有3个蛋白编码基因(Cdx4, Chic1和Xpct)，在三个基因的垂直同源序列在所有的脊椎动物种类中存在。在鸡和爪蟾中这些基因之间的连锁性质也是保守的。作者因此推断非真哺乳亚纲动物种类中Chic1和Xpct在基因组上的间隔作为Xic的同源区域(XicHR)。在真哺乳亚纲中，除了Xict基因外，Xic还含有两个RNA基因(Jpx和Ftx)和两个蛋白编码基因(Tsx和Cnbp2)[9]。Cnbp2是一个逆转座基因(retrotransed gene),且在真哺乳亚纲中是特异性的。在非真哺乳亚纲脊椎动物中不能检测检测到Tsx，Jpx和Ttx的任何同源物。在鸡和爪蟾中，XicHR含有5个蛋白基因(Fip1l2, Lnx3, Rasl11c, UspL和We4)，而在真哺乳亚纲动物基因组中不能检测这些基因的垂直同源物。此外，在鸡和爪蟾中XicHR中的基因内容、次序和定向都非常保守，表明在鸡的一个常染色体上的XicHR符合它的四脚动物一个祖先的原始状态。，第二个则与Xist的h5/m6外显子同源，而在真哺乳亚纲动物中h5/m6外显子在人和老鼠中保守，但在狗和牛别较大。由于存在两个的比对序列在狗和牛中的外显子重叠的可能性非常低，表明RNA基因Xist的这些外显子是Lnx3蛋白基因的同源物。

在有袋动物中，XicHR位于X染色体上[7,12]。作者已经测序含有Rasl11c和5'端Lnx3的负鼠(osum)的基因组克隆，同时也测序了Lnx3的mRNA序列。在基因序列数据库中，作者已经鉴定出We4基因。系统进化树分析表明这三个基因在负鼠中是有功能性的。因此，在真哺乳亚纲动物世系中发生的Lnx3的编码蛋白功能的丧失，至少同时伴随着XicHR的四个其他基因中的两个的假基因化。

Lnx3在所有脊椎动物纲中保守，且与其平行同源的Lnx1和Lnx2非常类似[11]。Xist保守的外显子与两个PDZ基序相似，且两者都含有移框突变。通过筛选表达序列标签(EST)，作者发现在鸡和爪蟾中，Lnx3在不同的组织和发育阶段转录。在负鼠中，Lnx3在雄性和雌性中都表达，这一情形与真哺乳亚纲动物中的Xist很不相同。在老鼠中，尽管Xist的h4/m4外显子(与Lnx3同源)对X染色体的失活不是必需的[12]，但是已经表明该外显子影响Xist RNA的转录和(或)加工[12]。这就暗示Xist起着Lnx3转录单位的某种调控成分的作用。

内参抗体和标签抗体有哪些

501 TTGGGTGGTTGTCCAAAAGAGCGTGCAGAGATTTCAATGCTTGAAGGAGC

标签抗体（Tag Antibody）可用于检测和纯化各种商品化表达载体上的标签序列，籍以分析检目的蛋白的表达含量及其功能。其原理是抗原—抗体反应，这些标签抗体可以高度特异地结合对应的标签融合蛋白。

● 纯化方便，一般通过一步纯化就可以获得纯度和质量比较好的融合蛋白；

● 纯化过程中可以对目的蛋白进行简单而的测量；

● 适用于大量不同蛋白质的表达。

Flag标签

★ 可sigma的flag抗体（F1804），用的效果一直很稳定，值得！

作用机理

● Flag序列的第二个氨基酸是酪氨酸(Tyr)，属于芳香族氨基酸，是抗原-抗体特异性反应的主要因素；

● 位于N端带负电的天冬氨酸(Asp)可辅助酪氨酸的抗原性；

● 靠近C端的六个氨基酸( Lys-Asp-Asp-Asp-Asp-Lys)组成一个亲水序列，可能形成高度暴露的三位蛋白质构型在理论上可使序列达到的亲水性，大大增强了Flag融合标签的抗原性。

● 序列短小，只用条人工合成的寡核苷酸链就可以编码；

● 结晶条件时Flag融合蛋白的构象与单纯目的蛋白的构象几乎完全相同，通常不会与目的蛋白相互作用并且通常不会影响目的蛋白的性质和功能，这样就有利用研究人员对融合蛋白进行下游研究；

● 融合有Flag标签的目的蛋白，可以直接通过Flag进行亲和层析，此层析为非变性纯化，可以纯化有活性的融合蛋白，并且纯化效率高；

● 抗Flag的抗体可有效识别Flag标签，这样就方便通过 Western blot、ELSA等方法对含有Flag的融合蛋白进行检测、鉴定；

● Flag融合标签含有一个肠激酶切割位点，肠激酶可以识别该短肽C端的五个氨基酸( Asp-Asp- Asp-Asp-Lys)，在有袋动物和真哺乳亚纲动物中的剂量补偿机制都涉及到染色体范围内的X染色体失活(XCI)，不过存在一些显著性的别。在有袋动物中，总是来自父本的X染色体失活，而且这种失活是不完全性的组织特异性的失活，而且似乎不涉及DNA甲基化[4]。此外，作者的结果表明在有袋动物中，XCI不需要Xist的参与。在单孔类动物(monotreme)中，XicHR转位到常染色体上，表明剂量补偿也不需要XicHR在染色体所处的位点[6]。因此，没有证据表明在真哺乳亚纲动物、有袋动物和单孔类动物中的剂量补偿效应是保守性的。可能的情况是Xist的XCI哺乳动物的一个共同的祖先存在，而在真哺乳亚纲动物中Xist替代了该机制发挥作用。然而，也应该强调X染色体和Y染色体进化分开的早期阶段中，大多数X染色体连锁的基因仍然拥有活性的Y染色体同源物，因而不需要剂量补偿。只有当Y染色体丢失掉大多数基因后才可能是通过失活整个染色体而进行剂量补偿得机制具有优越性。因此。作者提出，XCI可能是性染色体进化后期出现的。(翻译:Did Towersimper)通过肠激酶处理除去标签后即可获得天然的非融合蛋白质。

Flag标签抗体可以应用于检测和Flag标签融合蛋白的表达、细胞内，以及纯化或定量检测Flag融合表达蛋白等。

His-tag由人工合成的组氨酸首尾相连构成，通常由6个氨基酸（HHHHHH）组成，也有3个和8个的情况。另外，也存在一种由19个组氨酸构成的天然多聚组氨酸标签（HAT-tag)。

作用机理

● His融合标签可以很容易通过PCR技术，利用聚合酶与目的基因连接在一起。一般情况下将His融合标签添加在重组蛋白质的N端或C端，但添加在哪端需根据实际情况，添加位置是针对特定蛋白而言的；

不能用此法纯化的情况： ①由于金属离子可被吸附到次氮基三醋酸(NTA)树脂，带金属离子中心的蛋白质不可纯化；

● 分子量小，只有约0.84KD，一般不影响目标蛋白的功能；

● 既可纯化疏水性强的蛋白(非离子型表面活性剂存在的条件下)，也可纯化包涵体蛋白(变性条件下)；

● 可被用于蛋白质蛋白质、蛋白质DNA相互作用研究:可应用于多种表达系统，纯化的条件温和；

HA标签

c-myc标签

C-myc标签即人原癌基因产物myc蛋白表位，是一个由11个氨基酸残基构成的小标签，其序列为 GIu-GIn-Lys-eu- le-Ser-Glu-Glu-ALeu。这11个氨基酸作为抗原表位在不同的蛋白质框架中仍可识别其相应抗体。其对应单抗既可用于C-myc融合蛋白的免疫印迹和免疫沉淀，还可用于流式细胞术分析。C-myc标签也已广泛用于在酵母、细菌、昆虫及哺乳动物等表达体系中重组蛋白的检测和鉴定。

GST标签

GST即谷胱甘肽-S-转移酶，具有解毒作用，可将谷胱甘肽中的硫基转移至含硝基或卤化物的复合物中。其天然大小为26KD。

作用机理

● 应用于原核表达：

①作为一种高度可溶的蛋白，能增加外源蛋白的可溶性；

②在大肠杆菌中大量表达，起到提高表达量的作用。

● GST标签蛋白可在温和、非变性条件下洗脱，因此保留了蛋白的抗原性和生物活性；

● GST在变性条件下会失去对谷胱甘肽树脂的结合能力，因此不能在纯化缓冲液中加入强变性剂（如：盐酸胍或尿素等）；

● GST融合蛋白已经成为分子生物学领域的基本工具，其广泛用于研究蛋白质-DNA及蛋白质-蛋白质间的相互作用，也可作为抗原用于免疫学或的研究。

非亲和标签

非亲和标签的作用不是用来纯化重组蛋白，而是用于检测重组蛋白的表达、分布，帮助重组蛋白正确折叠以及保护融合蛋白免受宿主细胞降解等。

● 抗GFP的抗体也被用于GFP融合蛋白的检测，在GFP的荧光能力被破坏的情况下(如SDS-PAGE)

例如，肌球蛋白作为内参不适合做肌肉样品的内参。

例如，研究的目其他名称：叠连群标分子带有GST标签，不能用His标签抗体做检测，等等。